Usuwanie ze ścieków związków biogennych, tj.
azotowych i fosforowych, jest od wielu lat obiektem zainteresowania
zarówno badaczy, jak i praktyków. Uregulowania prawne wymuszają
stosowanie technik oczyszczania ścieków nie tylko z substancji
organicznych, ale także związków fosforu i azotu. Związki te stanowią
pożywkę dla flory i fauny wodnej. Jednak ich nadmiar nie jest w wodach
pożądany.
Związki azotu ulegają biochemicznym i fizykochemicznym przemianom, w
wyniku których powstaje amoniak. Związek ten jest toksyczny dla żywych
organizmów. Związki fosforu nie oddziałują toksycznie na organizmy
wodne, ale ich obecność powoduje proces eutrofizacji wód. Ponieważ
największe ilości związków biogennych trafia do wód powierzchniowych ze
zrzutów ścieków miejskich i przemysłowych, należy usuwać te związki w
procesach oczyszczania ścieków [1]. Usuwanie związków amonowych ze
ścieków metodami chemicznymi jest kosztowne, zaś zagospodarowanie
powstających osadów bywa kłopotliwe. Inną drogą usuwania
nieorganicznych związków azotu ze ścieków jest ich biologiczny rozkład
[2].
W ściekach dopływających do oczyszczalni azot występuje w związkach
organicznych i w solach amonowych. W tej postaci część azotu jest
wykorzystywana do budowy nowych komórek mikroorganizmów prowadzących
biochemiczny rozkład zanieczyszczeń. Jednak zużycie związków azotowych
w procesach wzrostu nie jest zbyt duże i nadmiar azotu jest usuwany ze
ścieków w postaci gazowej. Przebiega to etapami – w etapie początkowym
organiczne związki azotu są przekształcane do amoniaku i soli amonowych
a następnie, w warunkach tlenowych, w wyniku nitryfikacji związki
amonowe są utleniane do azotynów i azotanów. Kolejnym etapem jest
denitryfikacja, w wyniku której, w warunkach beztlenowych, azotany są
redukowane do azotu cząsteczkowego [3]. Przemiany azotu w oczyszczalni
ścieków zostały schematycznie pokazane są na rys. 1.
Wysokie stężenie azotanów jest niebezpieczne dla zdrowia a w
szczególności dla zdrowia dzieci. Nitrozoaminy tworzące się poprzez
azotyny i azotany są kancerogenne w wysokich stężeniach (powyżej 20
mg/dm3).
Biologiczna redukcja azotu opiera się na dwóch głównych zasadach:
asymilacji – wiązania azotu w komórce bakterii poprzez produkcje
biologicznych substancji komórkowych, dysymilacji – redukcji azotu z
azotynów i azotanów do formy gazowej. Najbardziej rozpowszechnioną
metodą redukcji w ściekach jest metoda bazująca na dysymilacji.
Niemniej, proces ten wymaga, aby azot był najpierw przekształcony do
postaci azotynów i azotanów w wyniku nitryfikacji. Po nitryfikacji azot
może być następnie zredukowany (dysymilacja) na drodze denitryfikacji
[4].
Rosnące zainteresowanie usuwaniem azotu ze ścieków wymaga dostosowania
rozwiązań technologicznych do różnorodnych wymagań, co prowadzi do
opracowywania nowych procesów. Innowacje obejmują zarówno nowe procesy
mikrobiologiczne, jak i nowe rodzaje stosowanych reaktorów a
najczęściej te dwa aspekty są ze sobą powiązane. Szczególne
zainteresowanie budzą ścieki zawierające podwyższone stężenia związków
azotowych, których oczyszczenie tradycyjną metodą
nitryfikacji/denitryfikacji może być utrudnione.
Doniesienia z poprzednich lat dopuszczały możliwość eliminacji azotu
również w obecności tlenu. Informacje te oceniano jednak bardzo
różnorodnie, ponieważ z jednej strony często w badaniach nie prowadzono
pomiarów zawartości tlenu, a z drugiej strony argumentowano, że w
niejednorodnie rozprzestrzenionej biomasie mogą tworzyć się mikrosfery
anoksyczne.
Usuwanie azotu w warunkach tlenowych możliwe jest bądź dzięki
wykorzystaniu bakterii, które są zdolne do jednoczesnego oddychania
tlenowego i azotanowego, bądź przez prowadzenie w pojedynczym aparacie
jednoczesnej nitryfikacji i denitryfikacji. Ten drugi proces jest
realizowany poprzez wydzielenie w aparacie stref tlenowych i
anoksycznych. Brak jest w literaturze przedmiotu danych dotyczących
możliwości przebiegu jednoczesnej nitryfikacji i denitryfikacji w
warunkach homogenicznych, tzn. bez wydzielonych stref tlenowych i
anoksycznych. Jednak sprawdziła się hipoteza o możliwości jednoczesnego
przebiegu nitryfikacji i denitryfikacji w pojedynczym aparacie w
warunkach tlenowych, homogenicznych.
Badania prowadzone w latach 90. XX wieku pokazały, że grupa bakterii,
które mogą być wykorzystane w procesach biologicznego usuwania związków
azotu ze ścieków jest znacznie obszerniejsza niż przedtem przypuszczano
[5], Najprostszą droga do usprawnienia procesów usuwania związków azotu
ze ścieków jest skrócenie nitryfikacji, tzn. zatrzymanie nitryfikacji
na pierwszym etapie (utlenianie związków amonowych do azotynów), a
następnie przeprowadzenie denitryfikacji. Innym sposobem skrócenia
nitryfikacji jest wykorzystanie różnic w szybkości wzrostu
poszczególnych grup mikroorganizmów. Najczęściej wybieranym czynnikiem
jest temperatura. W temperaturze powyżej 15°C szybkość wzrostu bakterii
utleniających azot amonowy jest większa od szybkości wzrostu bakterii
utleniających azotyny. Wymaga to kontrolowania wieku osadu [6, 7] bądź
szybkości rozcieńczania w hodowlach ciągłych bez recyrkulacji biomasy.
Metoda ta jest wykorzystywana w opisanym poniżej procesie SHARON.
Baterie nitrifikujące mogą być zdolne do denitryfikacji i
przekształcania azotu amonowego w azot cząsteczkowy
[8, 9]. Philips i in. [10] sformułowali hipotezę, ze w warunkach
ograniczonego dostępu tlenu w osadach, bakterie nitryfikujące
przestawiają się z nitryfikacji do limitowanej tlenem autotroficznej
nitryfikacji-denitryfikacji. Taka zmiana metabolizmu zwiększa szansę
przeżycia. Wydzielane pęcherzyki azotu wynoszą bakterie z osadów
dennych na powierzchnie, gdzie występują korzystniejsze warunki dla ich
wzrostu. Pomiary z wykorzystaniem znaczników izotopowych wykazały, że
wspomniane przemiany stanowią znaczący udział w przemianach związków
azotu w warunkach deficytu tlenu [10].
Liczne badania wykazały, że w naturze występują co najmniej dwa różne
mechanizmy biologicznego utleniania związków amonowych w warunkach
beztlenowych [11]. Bakterie należące do tlenowych nitryfikatorów, jak
np. Nirosomonas eutropha, wykazują zdolność do redukcji azotynów
wykorzystując związki amonowe lub hydroksyloaminę jako donora
elektronów. Maksymalna szybkość utleniania związków amonowych wynosi
ok. 2 μmol NH
3/min g białek [9].
Inna grupa drobnoustrojów autotroficznych wykorzystuje azotyny jako
akceptory elektronów bardziej efektywnie osiągając szybkość utleniania
amoniaku do 55 μmol/min g białek [12, 13,]. Tę metodę utleniania
związków amonowych określono jako anammox (anearobic ammonia oxidation)
[14]. Podstawową cechą procesu canon jest brak zapotrzebowania na
organiczne źródło węgla, co pozwala na zastosowanie tego procesu do
oczyszczania ścieków zawierających duże stężenia związków amonowych i
niewielkie stężenia substancji organicznych [15]. Połączenie w jednej
instalacji procesów canon i anammox zostało opatentowane i sprawdzone w
skali przemysłowej [16].
Tlenowa deamonifikacja
Liczne doniesienia wskazują na występowanie bakterii zdolnych do jednoczesnego oddychania tlenowego i azotanowego
[17, 18]. Stwierdzono, że część tych bakterii są to heterotroficzne
nitryfikatory utleniające związki amonowe do azotynów i redukujące
azotyny do azotu cząsteczkowego lub czasami do N2O [19, 20]. Mimo, iż
heterotroficzna nitryfikacja znana była od dawna [3], to uznawano, że
nie ma ona istotnego udziału w przemianach związków azotu. Główną
przyczyną takich stwierdzeń było to, że powszechną metodą oceny
szybkości nitryfikacji jest pomiar szybkości powstawania produktów tzn.
azotynów i azotanów. Tymczasem heterotroficzne nitryfikatory nie
akumulują znaczących ilości tych związków. Obserwacje, że Thiosphaera
pantotrofa jest nie tylko heterotroficznym nitryfikatorem, ale także
tlenowym denitryfikatorem [5, 21, 22] wymusiły zmianę poglądu na rolę
tych drobnoustrojów w przemianach azotu. Bilanse azotu dla hodowli
czystych kultur [19, 23] wykazały, ze szybkość heterotroficznej
denitryfikacji wielu szczepów drobnoustrojów jest znacznie wyższa niż
dotychczas przypuszczano. Badania nad współzawodnictwem Nitrosomonas
europea i Thiosphaera pantotropha w hodowlach ciągłych wykazały, że
T.pantotropha, przy niskich stężeniach rozpuszczonego tlenu oraz
wysokich stosunkach C/N, może szybciej asymilować azot amonowy niż
N.europaea [24]. Dla małych stosunków C/N heterotroficzna nitryfikacja
nie odgrywa istotnej roli. Warto zwrócić uwagę, że nawet dla wysokich
stosunków C/N udział heterotroficzne nitryfikacji, mimo że znaczący,
jest mniejszy od asymilacji związków azotowych przez rosnącą biomasę
drobnoustrojów. Wykorzystanie heterotroficznej nitryfikacji do usuwania
związków azotu ze ścieków związane jest ze znacznymi przyrostami
biomasy, co nie jest korzystne w wielu przypadkach.
Niektórzy autorzy przypuszczali, że aerobowe denitryfikatory są dosyć
rozpowszechnione w przyrodzie [25]. W warunkach kontrolowanych
drobnoustroje te mogłyby zostać wykorzystane do usuwania związków azotu
ze ścieków przyczyniając się do redukcji kosztów dzięki zmniejszeniu
objętości (lub wręcz eliminacji) reaktorów anoksycznych [199].
Lukow i Diekmann [25] prowadzili hodowlę wzbogacającą aerobowych
denitryfikatorów pochodzących z komory napowietrzania oczyszczalni
ścieków i stwierdzili, że wyodrębnione drobnoustroje przeprowadzają
wydzielanie azotu dla stężeń rozpuszczonego tlenu poniżej 30% stanu
nasycenia. Wyznaczone wartości współczynników wydajności biomasy
względem substratów (0,3 C-mol/C-mol dla kw.propionowego, 0,78
C-mol/C-mol dla kwasu butylowego i 0,55 C-mol/C-mol dla etanolu) są
zbliżone do wartości uzyskiwanych w tlenowym wzroście heterotrofów, co
przemawia za hipotezą o występowaniu tlenowej deamonifikacji.
Występowanie jednoczesnej nitryfikacji i denitryfikacji w warunkach
tlenowych było obserwowane w instalacjach oczyszczani ścieków od dawna
[26]. Przyjmuje się, że proces przebiega dzięki obecności stref
tlenowych i anoksycznych w pojedynczym aparacie w tym samym czasie.
Wystąpienie stref tlenowych i atoksycznych można uzyskać poprzez:
• ograniczone napowietrzanie cienkich warstw z unieruchomionymi drobnoustrojami;
• unieruchamianie drobnoustrojów wewnątrz żelu (polimeru);
• wykorzystanie membranowych systemów napowietrzania;
• wykorzystanie oporów transportu tlenu wewnątrz kłaczków osadu.
Badania Littletona i in. [27] drobnoustrojów pobranych z reaktorów, w
których stwierdzono występowanie jednoczesnej nitryfikacji i
denitryfikacji wykazały, że dominujące znaczenie mają autotroficzne
nitryfikatory i heterotroficzne denitryfikatory. Udział autotroficznej
denitryfikacji i heterotroficznej nitryfikacji był znikomy.
Z uwagi na małą szybkość wzrostu drobnoustrojów nitryfikujących
korzystne są takie rozwiązania procesowo-aparaturowe, które prowadzą do
zatrzymania mikroorganizm w reaktorze. Można to uzyskać poprzez
odpowiednią recyrkulację osadu lub jego unieruchomienie w reaktorze na
powierzchni stałego nośnika lub wewnątrz matrycy polimerowej.
W reaktorach tarczowych możliwe jest jednoczesne usuwanie związków organicznych (redukcja ChZT) oraz związków amonowych
w wyniku jednoczesnej nitryfikacji i denitryfikacji [28]. Szybkość usuwania ChZT dochodzi do
26 g/m
2d, zaś związków azotu do 1,9 g-N/m
2d.
Innym sposobem tworzenia stref tlenowych i anoksycznych jest wykorzystanie
reaktorów membranowych.
Półprzepuszczalna przegroda może być wykorzystana do dostarczania
tlenu, źródła węgla jednocześnie stanowi nośnik, na którym rozwija się
błona biologiczna [29, 30].
Ciekawym sposobem przeprowadzenia jednoczesnej nitryfikacji i
denitryfikacji jest koimmobilizacja bakterii nitryfikujących i
denitryfikujących w stałym nośniku [31].
W wyniku oporów dyfuzyjnych transportu tlenu w nośniku wytwarza się
gradient stężenia tlenu i w efekcie tworzą się dwie strefy: natleniona
przy powierzchni nośnika i anoksyczna w jego wnętrzu.
Uemoto i Saiki [32] zaproponowali unieruchamianie drobnoustrojów
nie w kulkach nośnika, ale w kapilarach. Oczyszczane ścieki o małym
stężeniu związków organicznych przepływają na zewnątrz kapilar, gdzie
panują warunki tlenowe, zaś wewnątrz kapilar przepływa roztwór
zawierający dodatkowe źródło węgla (np. metanol). Schemat aparatu
przedstawiono na rysunku 3.
W układzie homogenicznym procesy nitryfikacji i denitryfikacji mogą
przebiegać jako układ przemian następczych. Szybkość nitryfikacji
wzrasta wraz ze wzrostem stężenia rozpuszczonego tlenu. Wzrasta też
szybkość powstawania azotanów. Z kolei szybkość denitryfikacji wzrasta
wraz ze wzrostem stężenia azotanów i maleje ze wzrostem stężenia
rozpuszczonego tlenu. Dla niskich stężeń rozpuszczonego tlenu ogólna
szybkość usuwania azotu jest równa szybkości nitryfikacji będącej
etapem limitującym. Z kolei przy wysokich stężeniach rozpuszczonego
tlenu hamowanie denitryfikacji powoduje zmniejszanie szybkości usuwania
azotu. Największą szybkość usuwania azotu uzyskuje się dla takiego
stężenia rozpuszczonego tlenu, dla którego szybkości nitryfikacji i
denitryfikacji są sobie równe.
Zatem przy ustalonej kinetyce, graniczne
stężenie rozpuszczonego tlenu jest zależne od stosunku nitryfikatorów do denitryfikatorów.
Na rysunku 4. przedstawiono zależność granicznego stężenia
rozpuszczonego tlenu od udziału nitryfikatorów w osadzie czynnym. W
obliczeniach wykorzystano średnie wartości parametrów kinetycznych
osadu czynnego [33]. Wraz ze zwiększaniem się udziału nitryfikatorów
maleje graniczne stężenie rozpuszczonego tlenu. Im więcej
nitryfikatorów, tym przy niższym stężeniu rozpuszczonego tlenu szybkość
nitryfikacji zrówna się z szybkością denitryfikacji.
Przeprowadzone serie badań dla różnych wartości stężenia rozpuszczonego
tlenu oraz przy określonym, początkowym stężeniu źródła węgla i azotu
oraz przy stałych wartościach temperatury i pH mieszaniny potwierdziły
te przypuszczenia.
Na rysunku 5 przedstawiono zależność stężenia azotu całkowitego dla
różnych stężeń rozpuszczonego tlenu od czasu. Stwierdzono, że dla
czterech przypadków, gdzie stężenie rozpuszczonego tlenu jest w
przedziale 0,2 do 1,2 mg/dm
3,
następuje spadek stężenia azotu całkowitego w czasie hodowli.
Największa szybkość usuwania azotu występuje przy stężeniu
rozpuszczonego tlenu równym
0,6 mg/dm3. Warto również podkreślić, iż wraz ze wzrostem stężenia
rozpuszczonego tlenu, malała szybkość usuwania azotu, a proces
deamonifikacji obserwowano dla stężeń rozpuszczonego tlenu do wartości
1,2 mg/dm
3.
W warunkach beztlenowych nie obserwowano usuwania azotu. Ponieważ
jedynym źródłem azotu były sole amonowe, więc w warunkach beztlenowych
nie zachodził proces nitryfikacji.
W celu oszacowania szybkości usuwania azotu zastosowano aproksymację
liniową dla zależności zmian zawartości azotu całkowitego przy różnym
stężeniu rozpuszczonego tlenu. Uwzględniając charakter zmian zawartości
azotu w czasie aproksymacja taka wydaje się być najbardziej
odpowiednią. Wyniki aproksymacji przedstawiono na rysunku 6.
Współczynnik a (współczynnik kierunkowy prostej) w równaniu linii
regresji określa szybkość zmian zawartości azotu całkowitego w czasie.
Ujemna wartość tego współczynnika oznacza spadek, a dodatnia wzrost
zawartości azotu całkowitego. Wyznaczając zależność współczynnika a od
ilości tlenu rozpuszczonego można określić warunki napowietrzania, przy
których następuje najszybszy spadek zawartości azotu całkowitego.
Z zależności liniowych można stwierdzić, że
największą szybkość zmian azotu uzyskano dla stężenia rozpuszczonego tlenu 0,6 mg/dm3. Na rysunku 7 przedstawiono zależność szybkości zmian stężenia azotu całkowitego od zawartości rozpuszczonego tlenu.
Największą szybkość procesu uzyskano dla stężenia tlenu rozpuszczonego na poziomie 0,6 mg/dm
3. Wartość ta jest zbliżona do wartości obliczonej z modelu osadu czynnego, która wyniosła ok. 0,5 mg/dm
3.
Wydaje się, że są to wartości "optymalne", tzn. przy tym stężeniu tlenu
szybkości procesu nitryfikacji i denitryfikacja wyrównują się i procesy
te mogą przebiegać jednocześnie. Warto podkreślić, że w reaktorze było
intensywne mieszanie oraz nie zastosowano żadnego nośnika, w którym
byłaby unieruchomiona biomasa w wyniku, czego nie tworzyły się strefy
tlenowe i beztlenowe.
Otrzymana wartość doświadczalna
jest większa od wartości przeciętnej dla tlenowego wzrostu heterotrofów
wynoszącej 0,45 g/g [85]. Jest to spowodowane wzrostem w osadzie
czynnym drobnoustrojów autotroficznych.
Na rysunku 8 przedstawiono zależność wartości współczynnika wydajności
biomasy względem substratu od stężenia rozpuszczonego tlenu. Linią
przerywana zaznaczono przeciętna wartość wydajności biomasy dla
drobnoustrojów heterotroficznych. Wraz ze wzrostem stężenia
rozpuszczonego tlenu rośnie wartość współczynnika wydajności biomasy
względem substratu. Świadczy to o zwiększającym się udziale wzrostu
bakterii autotroficznych w ogólnym przyroście biomasy. Można
przypuszczać, że ten przyrost biomasy jest związany ze wzrostem
bakterii nitryfikujących.
Przeprowadzona analiza usuwania azotu hodowlach okresowych i
półciągłych z wykorzystaniem osadu czynnego i ograniczonym stężeniem
rozpuszczonego tlenu pozwoliła na określenie warunków, w jakich może
przebiegać usuwanie związków amonowych w warunkach tlenowych.
Stwierdzono,
że największa szybkość usuwania azotu występuje dla stężenia rozpuszczonego tlenu 0,6 mg/dm3.
Wraz ze wzrostem stężenia rozpuszczonego tlenu, malała szybkość
usuwania azotu, jednak obserwowano deamonifikację dla stężeń
rozpuszczonego tlenu do 1,2 mg/dm
3.
Badania hodowli okresowych potwierdziły możliwość jednostopniowego
usuwania azotu w warunkach tlenowych. Stwierdzono także, że proces jest
heterotroficzny. Występowały znaczne zmiany stężenia glukozy, zaś brak
glukozy w podłożu powodował zahamowanie usuwania związków amonowych.
Przeprowadzone badania wskazują na możliwość usuwania związków azotu
ze ścieków w wyniku jednoczesnej autotroficznej nitryfikacji i
heterotroficzej denitryfikacji przebiegających w warunkach
homogenicznych, tzn. bez wydzielonych stref tlenowych i anoksycznych.
Możliwe jest zatem jednostopniowe usuwanie związków amonowych ze
ścieków w warunkach tlenowych.